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人粒細(xì)胞無(wú)形體病實(shí)驗(yàn)室檢測(cè)方案

發(fā)布時(shí)間:2016-7-13 10:28:06??????瀏覽次數(shù):

為保證及時(shí)、科學(xué)地采集、運(yùn)送人粒細(xì)胞無(wú)形體病病例(包括疑似病例)及疫源地調(diào)查的各種類型標(biāo)本,規(guī)范人粒細(xì)胞無(wú)形體病的實(shí)驗(yàn)室檢測(cè)程序,提高檢測(cè)質(zhì)量,為明確診斷或開展相關(guān)的科學(xué)研究提供實(shí)驗(yàn)室依據(jù),特制定本方案。

一、樣本采集對(duì)象

(一) 人粒細(xì)胞無(wú)形體病病例(包括疑似病例,以下同)。

(二) 病例密切接觸者或其他健康人群。

(三) 疫源地可疑宿主動(dòng)物(野生動(dòng)物及狗、羊、牛等家畜)、媒介蜱。

二、標(biāo)本種類及采集方法

(一) 抗凝血。

常用EDTA抗凝管或枸櫞酸鹽抗凝管采集血液5ml,用于病原分離。應(yīng)盡可能在病人使用抗生素前進(jìn)行血液的采集。

(二)非抗凝血。

用無(wú)菌真空管,采集病例、健康人群及宿主動(dòng)物非抗凝血5ml,用于血清抗體及PCR檢測(cè)。采集后,應(yīng)及時(shí)分離血清,將血清、血球分別保存。急性期抗體及PCR檢測(cè)用血液采集盡可能在發(fā)病后1周內(nèi),恢復(fù)期抗體檢測(cè)標(biāo)本采集至少間隔2-3周。如第2份血清在1個(gè)月之內(nèi)抗體升高不明顯的,應(yīng)建議間隔2-4周后采集第3份血液標(biāo)本。

(三)包涵體檢測(cè)血涂片的制備。

采集血液標(biāo)本后,制作厚血片,進(jìn)行紅細(xì)胞裂解處理等。

(四)媒介蜱標(biāo)本的采集。

采集動(dòng)物體表媒介蜱,用鑷子夾取,放入鋪墊有潮濕濾紙或紗布的青霉素小瓶或試管中,用紗布包緊瓶口以防止蜱爬出。實(shí)驗(yàn)室接到蜱標(biāo)本后,首先應(yīng)進(jìn)行種屬鑒定,然后按類別分組(1-5只蜱/組),采用75%酒精浸泡30min后,用無(wú)菌蒸餾水反復(fù)沖洗3次。最后進(jìn)行分組研磨,研磨液用于提取DNA,進(jìn)行PCR擴(kuò)增。

(五)有條件時(shí),可采集活檢或尸檢標(biāo)本,冰凍、福爾馬林固定或石蠟包埋后進(jìn)行實(shí)驗(yàn)室檢測(cè)。具體方法參照病理實(shí)驗(yàn)室相關(guān)要求和衛(wèi)生部《傳染病人或疑似傳染病人尸體解剖查驗(yàn)規(guī)定》的相關(guān)要求。

三、標(biāo)本采集和保存注意事項(xiàng)

標(biāo)本采集應(yīng)符合無(wú)菌操作要求。抗凝血如不能立即床邊接種,應(yīng)置于4℃環(huán)境保存,避免冰凍(不超過(guò)2周)。非抗凝血應(yīng)及時(shí)進(jìn)行無(wú)菌分離血清,血清用于抗體檢測(cè),血球部分研磨后提取DNA用于PCR檢測(cè)。如不能及時(shí)檢測(cè),可暫置于-20℃環(huán)境保存。所有標(biāo)本應(yīng)置入大小適合、帶螺旋蓋、內(nèi)有墊圈的凍存管內(nèi),擰緊管口。

標(biāo)本采集后,應(yīng)認(rèn)真填寫采樣登記表。

四、實(shí)驗(yàn)室檢測(cè)

(一)包涵體的檢測(cè)。

1. 血片及白細(xì)胞涂片制備

采集的抗凝血標(biāo)本盡快用血球?qū)油蒲?,待干燥后冷丙酮固?/span>10min;或提取抗凝血中的白細(xì)胞并進(jìn)行涂片,待干燥后冷丙酮固定10min

2. 染色

通常采用瑞氏(Wright)染色法、姬氏(Giemsa)染色法及瑞-姬混合染色法。有條件的實(shí)驗(yàn)室,可使用美國(guó)CDC推薦的染色方法。

3. 染液配置方法

1)瑞-姬染液:取瑞氏染料和姬氏染料各0.5 g,以甲醇研溶,加甲醇500ml保存,每天搖勻1次,1周后可使用。
   
2)改良Mc Donald法瑞-姬染色劑:75 ml甘油(分析純)中加入磷酸鹽緩沖液(Na2HPO4 1gKH2PO4 2g),以4 ml蒸餾水溶解,37 ℃水浴24 h溶解混勻,用濾紙過(guò)濾,保存于密封的棕色瓶中備用。上述甘油緩沖液1.5 ml加瑞-姬染色劑50 ml,混勻后備用。

4. 染色步驟

血推片或白細(xì)胞涂片分別以兩種染色劑染色2 min,再加蒸餾水作用5 min,用自來(lái)水沖洗。
    5.
結(jié)果觀察

中性粒細(xì)胞中可見桑葚狀包涵體(見圖1),并注意保存相關(guān)標(biāo)本,以便進(jìn)行復(fù)核。

(二)血清學(xué)檢測(cè)。

常用血清學(xué)方法為間接免疫熒光(IFA)法。采集急性期(發(fā)熱初期,一般發(fā)病1周內(nèi))與恢復(fù)期(至少間隔2-3周)雙份血清。如恢復(fù)期血清抗體檢測(cè)陰性,應(yīng)建議醫(yī)生采集第3份血液樣本(間隔2-4周)。

1. 試劑 

使用國(guó)際推薦的、經(jīng)過(guò)ISO質(zhì)量認(rèn)證的產(chǎn)品。

2. 方法及操作按說(shuō)明書進(jìn)行。

3. 結(jié)果解釋

IFA檢測(cè)結(jié)果解釋按說(shuō)明書進(jìn)行。

如果同時(shí)檢測(cè)雙份血清,IgG抗體4倍升高,則結(jié)果強(qiáng)烈支持嗜吞噬細(xì)胞無(wú)形體感染。如果急性期抗體升高,而恢復(fù)期沒有升高或輕微升高,則應(yīng)采集第3份血液樣本(間隔2-4周)進(jìn)行進(jìn)一步檢測(cè)。

(三)嗜粒細(xì)胞無(wú)形體核酸PCR檢測(cè)。

目前,國(guó)際推薦使用16S rRNA基因檢測(cè)方法,有條件的實(shí)驗(yàn)室,可進(jìn)一步選用熱休克蛋白基因groEL擴(kuò)增方法。

1. DNA提取

用急性期、未使用抗生素的EDTA抗凝血或非抗凝血血球部分、白細(xì)胞及蜱研磨液提取DNA。最后,以AE緩沖液50μl抽濾以提高回收的DNA濃度。如采用血液白細(xì)胞層提取DNA,可明顯提高陽(yáng)性檢出率。實(shí)驗(yàn)時(shí),應(yīng)采集當(dāng)?shù)卣H搜和瑫r(shí)提取DNA,作為PCR的陰性對(duì)照。

2. PCR擴(kuò)增

116S rRNA基因檢測(cè):16S rRNA 高度保守,是PCR檢測(cè)最常用的擴(kuò)增靶基因,巢式PCR檢測(cè)可提高檢測(cè)靈敏度和特異度,采用屬特異及種特異引物同時(shí)進(jìn)行檢測(cè)。PCR檢測(cè)應(yīng)分區(qū)進(jìn)行,避免污染。使用引物序列見表1。

巢式PCR檢測(cè)無(wú)形體及埃立克體16S rRNA基因常用引物

引物名稱

序 列

片段長(zhǎng)度(bp)

Eh-out1(AF414399)

5’-TTG AGA GTT TGA TCC TGG CTC AGA ACG-3’

653

Eh-out2(AF414399)

5’-CAC CTC TAC ACT AGG AAT TCC GCT ATC-3’

Eh-gs1(AF414399)

5’-GTA ATA CT GTA TAA TCC CTG-3’

282

Eh-gs2(AF414399)

5’-GTA CCG TCA TTA TCT TCC CTA-3’

HGA1

5’-GTC GAA CGG ATT ATT CTT TAT AGC TTG -3’

389

HGA2

5’-TAT AGG TAC CGT CAT TAT CTT CCC TAC-3’

 

PCR反應(yīng)混合物的準(zhǔn)備按常規(guī)進(jìn)行。第一輪反應(yīng)采用外引物對(duì)Eh-out1Eh-out2,DNA模板10μl(白細(xì)胞提取的DNA可適當(dāng)減少)。PCR反應(yīng)體系總體積為25μl或50μl(需要進(jìn)行PCR測(cè)序或克隆時(shí),應(yīng)適當(dāng)擴(kuò)大反應(yīng)體系),其它成分的濃度按常規(guī)進(jìn)行。反應(yīng)程序如下:

94℃  5min

40循環(huán):94  45sec

        55℃  50sec

        72℃  1min

72℃  總延伸 5min

第二輪反應(yīng)使用2對(duì)引物分別進(jìn)行巢式PCR2對(duì)引物分別是無(wú)形體屬及埃立克體屬通用內(nèi)引物(Eh-gs1、Eh-gs2);以及HGA種特異性引物(HGA1HGA2)。檢測(cè)樣本取第一輪產(chǎn)物1-2μl為模板,陽(yáng)性對(duì)照取0.5μl為模板。反應(yīng)程序同第一輪反應(yīng)。

2)熱休克蛋白基因groEL擴(kuò)增

groEL基因的應(yīng)用相比,16S rRNA基因的應(yīng)用更為廣泛,但groEL基因在不同種屬間具有較大的變異性。因此,對(duì)于診斷及菌株的鑒定,groEL基因均具有重要意義。該基因擴(kuò)增使用巢式PCR,引物序列見表2。

2  groEL基因擴(kuò)增常用引物   

引物名稱

 

退火溫度

片段長(zhǎng)度bp)

HS1

5’-TGG GCT GGT  AA/CTGA AAT

52

1431

HS6

5’-CCI CCI GGI ACI  AC/TACC TTC

HS43

5’-ATA/TGCA/T AAG/AGAA GCA TAG TC

55

HGA480

HS45

5’-ACT TCA CGC/T)(C/TTCA TAG AC

HME528

DNA提取同上。PCR檢測(cè)時(shí),反應(yīng)混合物的準(zhǔn)備按常規(guī)進(jìn)行。DNA模板量同16S rRNA基因檢測(cè)。巢式PCR第一輪反應(yīng)采用外引物對(duì)HS1HS6

反應(yīng)程序如下:

 3循環(huán):94 1min

         48℃ 2min

         70℃ 90sec

37循環(huán):88 1min

          52℃ 2min

          70℃ 90sec

 68℃ 總延伸 5min

第二輪PCR引物采用HS43HS45。檢測(cè)樣本取第一輪產(chǎn)物1-2μl為模板,陽(yáng)性對(duì)照取0.5μl為模板。反應(yīng)程序同第一輪反應(yīng)。反應(yīng)程序同第一輪反應(yīng),但退火溫度由52℃改為55℃。

3.測(cè)序及分析

對(duì)擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行測(cè)序并進(jìn)行同源比較,分析當(dāng)?shù)亓餍兄昱c其它地區(qū)的變異性。

(四)病原體分離培養(yǎng)。

多用HL-60進(jìn)行嗜吞噬細(xì)胞無(wú)形體的分離培養(yǎng)。最常用的分離方法是將白細(xì)胞部分接種培養(yǎng)基,然后將100-500μl抗凝血接種到懸浮有2×1051×106細(xì)胞內(nèi), 2-3天染色檢查包涵體,一般5-10天可查見包涵體。由于分離可能受到紅細(xì)胞的影響,因此,建議使用以下方法:

1.白細(xì)胞分離:采用密度梯度離心方法(Ficoll-Paque)。一般采用2-3 ml EDTA抗凝血,用2倍體積的無(wú)菌Hanks 平衡鹽溶液稀釋,最后采用HistopaqueSigma,St . louis, Mo)密度梯度離心分離白細(xì)胞,可以獲得較高的白細(xì)胞,用以分離HGA。采用白細(xì)胞分離方法進(jìn)行接種時(shí),應(yīng)注意防止操作過(guò)程中的污染。

2. 紅細(xì)胞裂解后收集白細(xì)胞(NHCl4裂解法)。

3. 在使用含有紅細(xì)胞的標(biāo)本培養(yǎng)后,另加入宿主未感染的細(xì)胞,建立混合培養(yǎng)。

血液白細(xì)胞懸浮于2ml體積、含有5-10%胎牛血清的培養(yǎng)基中,且在25 cm2培養(yǎng)瓶?jī)?nèi)與培養(yǎng)細(xì)胞作用3小時(shí)。37℃、5% CO2 條件下振搖孵育,可增加病原體與細(xì)胞的作用。

病原體的鑒定:可通過(guò)種特異引物進(jìn)行PCR鑒定。

五、生物安全

在標(biāo)本采集、運(yùn)輸及實(shí)驗(yàn)室工作過(guò)程中,生物安全應(yīng)參照《病原微生物實(shí)驗(yàn)室生物安全管理?xiàng)l例》中的有關(guān)要求進(jìn)行。

(一)實(shí)驗(yàn)室生物安全。

標(biāo)本滅活、病原DNA標(biāo)本提取及病原體分離操作應(yīng)在生物安全Ⅱ級(jí)實(shí)驗(yàn)室進(jìn)行。非感染性材料的檢測(cè)可在生物安全I級(jí)實(shí)驗(yàn)室進(jìn)行。

(二)血液標(biāo)本采集安全注意事項(xiàng)。

采集病例的標(biāo)本時(shí),應(yīng)做好個(gè)人防護(hù)。采集者應(yīng)戴乳膠手套,盡量避免病例的血液外溢或直接接觸。如發(fā)生血液外溢污染環(huán)境時(shí),應(yīng)及時(shí)采用75%酒精或常用消毒劑進(jìn)行消毒處理。應(yīng)按照對(duì)傳染性樣本的要求,對(duì)采集標(biāo)本的器具及病人止血棉球及時(shí)進(jìn)行消毒處理。防止銳器扎傷皮膚,一旦發(fā)生,應(yīng)按臨床外科要求,及時(shí)進(jìn)行傷口清創(chuàng)。如直接沾染了臨床診斷病例或確診病例的血液,除及時(shí)消毒皮膚外,應(yīng)口服強(qiáng)力霉素預(yù)防感染,服用劑量參照《人粒細(xì)胞無(wú)形體病診療方案(試行)》(附件1)。

(三)采集動(dòng)物宿主與媒介蜱標(biāo)本個(gè)人防護(hù)。

野外采集標(biāo)本時(shí),應(yīng)穿著顏色明亮的防護(hù)服,并將衣袖或褲管口扎緊以防蜱叮咬人體,且容易發(fā)現(xiàn)蜱的附著。一旦發(fā)現(xiàn)有蜱附著體表,應(yīng)用鑷子夾取,不要用手直接摘除。野外作業(yè)或活動(dòng)的人員可使用驅(qū)避劑或防蚊油噴涂皮膚,也可用硫化鉀代替防蚊油。

(四)標(biāo)本運(yùn)輸安全注意事項(xiàng)。

應(yīng)參照《病原微生物實(shí)驗(yàn)室生物安全管理?xiàng)l例》中的有關(guān)要求(B類)進(jìn)行。

(五)在診療及標(biāo)本的采集、包裝和實(shí)驗(yàn)室檢測(cè)等過(guò)程中所產(chǎn)生的醫(yī)療廢物,應(yīng)按照《醫(yī)療廢物管理?xiàng)l例》和《醫(yī)療衛(wèi)生機(jī)構(gòu)醫(yī)療廢物管理辦法》等相關(guān)規(guī)定處理。